Анализы на антитела дифтерии коклюша столбняка

Не менее 3 часов после последнего приема пищи. Можно пить воду без газа.

Столбняк – острое инфекционное, часто смертельное заболевание, которое вызывается нейротоксином, продуцируемым Clostridium tetani. Токсин, поражая нервную систему, приводит к развитию тонического напряжения скелетной мускулатуры и генерализованным судорогам. В случае, если существует опасность проникновения возбудителя столбняка через поврежденные кожные покровы, рекомендуется иммунизация столбнячным анатоксином или противостолбнячными антителами. Даже если пациент в младенчестве или детстве был привит против столбняка, необходимо подтверждать защитный титр антител в крови, так как существует возможность неверно проведенной иммунизации или снижения титра антител с возрастом.

• Оценка напряженности иммунитета;
• Оценка эффективности вакцинации против столбняка после введения вакцины (через 4-8 недель).

Референсные значения (вариант нормы):

1 — обследования до иммунизации;
2 — через 1 месяц после иммунизации;
3 — через 6 месяцев после иммунизации;
4 — через 1 год после иммунизации;
K — контрольная группа.

Результаты исследования напряженности иммунитета против столбняка (табл. 2) свидетельствуют, что число лиц, у которых отмечено нарастание титров антител после иммунизации было незначительным — 2,2% до прививки и 3,3% через год. При этом, увеличилось число лиц с титрами 1:20, 1:40 с 1,1% до 9,0% через год. Существенные изменения отмечены также в группе наблюдаемых лиц с титрами 1:80 и выше — до иммунизации в группе их было 96,6%, а через год 87,7% (t > 2).

1 — обследования до иммунизации;
2 — через 1 месяц после иммунизации;
3 — через 6 месяцев после иммунизации;
4 — через 1 год после иммунизации;
K — контрольная группа.

1. Проведение туровой иммунизации взрослого населения существенно не сказалось на улучшении показателей защищенности против дифтерии и столбняка студентов — лиц 18—20-летнего возраста.
2. Если в межэпидемический период достаточно серологических наблюдений выборочного масштаба, то во время эпидемии, когда ставятся задачи проведения внеплановых профилактических прививок, необходим серологический скрининг, с целью выявления незащищенных к дифтерии и столбняку лиц, с последующей их иммунизацией.

1. Басова Н. Н. Методические переориентации и выбор приоритетов в эпиднадзоре и управление некоторыми инфекциями/ 70 лет М. И. Леви: Науч. труды, посвящ. юбиляру.— М., 1997.— С. 28—40.
2. Рур К. Расширенная программа иммунизации в Европе в 90-е годы//Совещание по эпидемии дифтерии в Европе.— С.-Петербург, 1993.— С. 3—12.

источник

А чем он может помочь? Могу понять желание сдать на антитела, если вы созрели все же сделать прививки. А так просто для чего? Тем более, незаметно вряд ли можно перенести столбняк или полиомиелит.:001:Ну на краснуху можно сдать перед планированием беременности. 🙂 В общем, я бы не таскала ребенка на эти анализы, потому что не вижу смысла. Хотя я, конечно, могу просто не понимать чего-то.

я согласна. Я как то перед садом тоже задалась этим. Узнала где что берут — , кстати,анализов много , они не все в одном месте делаются. Когда я звонила и разговаривала, то мне сказали, что надо много крови набрать , так как анализов много . Я хотела почти на все , начто делают прививки.
Но потом решила, что прививки я все равно делать ребенку не буду, так а зачем мне тогда мучать его ? Так что, не делала, а просто писала отказ и все.

Не знаю про антитела, но я своего ребенка сама повела сдавать мазок из носоглотки на коклюш и он к сожалению подтвердился.Вот так наши врачи лечат, что сами мамы ставят диагнозы своим детям и лечат кстати тоже сами.У нас коклюшные дети гуляют повсюду, им просто ставят диагноз ОРВИ и тп., как нам поставили.
Извените что тема не об этом.

А на счет всех этих болячек сдайте анализы которые вам нужны в любой платной лаборатории вот и все, вам уж там точно скажут что есть, а чего нет.

Не знаю про антитела, но я своего ребенка сама повела сдавать мазок из носоглотки на коклюш и он к сожалению подтвердился.Вот так наши врачи лечат, что сами мамы ставят диагнозы своим детям и лечат кстати тоже сами.У нас коклюшные дети гуляют повсюду, им просто ставят диагноз ОРВИ и тп., как нам поставили.
Извените что тема не об этом.

А на счет всех этих болячек сдайте анализы которые вам нужны в любой платной лаборатории вот и все, вам уж там точно скажут что есть, а чего нет.
а по-подробнее можно ?
как заподозрили коклюш ?
где сдавали ?

Не знаю про антитела, но я своего ребенка сама повела сдавать мазок из носоглотки на коклюш и он к сожалению подтвердился.
В нашем случае мазок ничего не дал. Ребенок сильно кашлял, назначили курс антибиотиков, а после них( если это был коклюш) мазок из носоглотки ничего не показывает, информативен только анализ крови. Так что то, что это коклюш мы поняли достаточно поздно, только на 3-ей неделе болезни.:005:

Автор, вы это тоже учтите, если анализ будете делать.

ЗЫ:про то, как у нас ставят диагноз коклюш — вообще отдельная тема.:015:

В нашем случае мазок ничего не дал. Ребенок сильно кашлял, назначили курс антибиотиков, а после них( если это был коклюш) мазок из носоглотки ничего не показывает, информативен только анализ крови. Так что то, что это коклюш мы поняли достаточно поздно, только на 3-ей неделе болезни.:005:

Автор, вы это тоже учтите, если анализ будете делать.

ЗЫ:про то, как у нас ставят диагноз коклюш — вообще отдельная тема.:015:
Дааа, очень интересненько! Вот интересно, а мазок из носоглотки на дифтерию тоже можно сдать. Никто не знает случайно?
А где вы делали мазок? Просто лаборатории разные и везде смотрят по-разному. У нас один раз в мазке из носоглотки ничего не высеялось, а так как горло у ребенка болело сильно, то при пересдаче в другой лаборатории высеялся стрептококк, и в таком колличестве, что странно как в другой-то не заметили.

Дааа, очень интересненько! Вот интересно, а мазок из носоглотки на дифтерию тоже можно сдать. Никто не знает случайно?
А где вы делали мазок? Просто лаборатории разные и везде смотрят по-разному. У нас один раз в мазке из носоглотки ничего не высеялось, а так как горло у ребенка болело сильно, то при пересдаче в другой лаборатории высеялся стрептококк, и в таком колличестве, что странно как в другой-то не заметили.

источник

Изобретение относится к медицине, а именно инфекционной иммунологии и клинической лабораторной диагностике, и касается разработки тест-системы, предназначенной для единовременной полуколичественной оценки напряженности гуморального поствакцинального иммунитета к коклюшу, дифтерии и столбняку на основе определения уровня антител к коклюшному цельноклеточному антигену, а также дифтерийному и столбнячному анатоксинам, как результат профилактической вакцинации соответствующими вакцинными препаратами.

Массовая иммунизация населения коклюшно-дифтерийно-столбнячной вакциной (КДСВ) является основным инструментом профилактики коклюша, дифтерии и столбняка в РФ. Заболеваемость дифтерией и столбняком в РФ благодаря этой мере находится на спорадическом уровне, в то время как реальные цифры заболеваемостью коклюшем достаточно сложно оценить, они, очевидно, значительно ниже приводимых в отраслевых отчетах. Все перечисленные заболевания представляют серьезную опасность для здоровья людей, прежде всего детского населения. Мониторинг успешности иммунизации населения является необходимой мерой для контроля над заболеваемостью инфекциями, оценки состояния иммунитета в группах риска (прежде всего для детей) и оперативного выявления и устранения случаев низкой реактивности иммунной системы в ответ на введение вакцины среди населения. Подобные случаи могут быть вызваны рядом факторов: воздействием техногенного загрязнения, нарушениями в системе транспортировки и хранения вакцин, систематического нарушения техники введения вакцин.

Для мониторинга эффективности вакцинации используется целый ряд серологических методов.

Реакция агглютинации является классическим методом полуколичественной оценки противококлюшного иммунитета. Метод базируется на визуальной детекции осадка иммунных комплексов, образующихся при смешивании позитивной сыворотки крови и диагностикума. Диагностикум представляет собой инактивированные клетки коклюшного микроба вакцинных штаммов Bordetella pertussis (1.2.0, 1.0.3, 1.2.3). Полуколичественный вариант метода позволяет определить титр противококлюшных антител. Титр образца определяют по наибольшему разведению исследуемой сыворотки крови, которое дает при взаимодействии с диагностикумом осадок определенной плотности. Плотность осадка оценивается визуально. Реакция агглютинации является неинструментальным методом, его постановка не требует наличия считывающей аппаратуры. Между тем полуколичественная оценка противококлюшного иммунитета требует приготовления кратных разведений сыворотки, что усложняет процесс анализа. Длительность инкубации диагностикума с образцом происходит в течение суток, что существенно отдаляет получение результатов теста, а также ограничивает возможность проведения анализа в рамках жесткого временного регламента работы лабораторий.

Альтернативным методом оценки напряженности противококлюшного иммунитета является иммуноферментный анализ (ИФА). Принцип метода заключается в детекции антител класса IgG, специфичных к антигенам коклюшного микроба (прежде всего коклюшному токсину и гемагглютинину), при помощи антивидовых антител, меченных ферментом, в частности пероксидазой хрена. Фермент обеспечивает протекание цветной реакции, субстратом которой является хромоген. Интенсивность цветной реакции тем выше, чем больше концентрация в реакционной среде фермента, количество которого в свою очередь пропорционально концентрации противомикробных антител. Интенсивность цветной реакции оценивается спектрофотометрически, как правило, количественно. Иммуноферментный анализ позволяет осуществлять количественную детекцию антител класса IgG, которые делают наибольший вклад в защиту организма от инфекции, хотя в отношении коклюша не стоит недооценивать роль IgA, основного иммуноглобулина слизистых оболочек дыхательных путей. Иммуноферментный анализ более оперативен, чем реакция агглютинации, лучше приспособлен для автоматизации, не требует приготовления кратных разведений исследуемой сыворотки крови. В настоящее время именно ИФА является основным методом оценки противококлюшного иммунитета в мире. Однако оценка агглютининов не утрачивает своей актуальности, поскольку до настоящего времени не подтверждена роль IgG против отдельных антигенов коклюшного микроба или их смесей (ссылка ВОЗ), в то время как ряд исследований, проведенных в 40-50-х годах прошлого столетия, продемонстрировали роль агглютининов в защите от коклюшной инфекции.

Иммуноферментный анализ является основным методом детекции противостолбнячных и противодифтерийных антител. Для этих двух инфекций показана четкая протективная роль иммуноглобулинов класса G, специфичных к дифтерийному и столбнячному анатоксину, установлены защитные уровни антител.

Помимо ИФА в клинической практике существенна роль реакции пассивной гемагглютинации для оценки защищенности от дифтерии и столбняка. Принцип реакции агглютинации заключается в визуальной детекции осадка, образующегося при смешивании исследуемого образца сыворотки крови с эритроцитарным диагностикумом. Эритроцитарный диагностикум представляет собой инактивированные танизированные эритроциты барана, конъюгированные с антигеном: дифтерийным или столбнячным анатоксином. Наличие в исследуемом образце антител против инфекций приводит к агглютинации эритроцитов и выпадению их в осадок. Реакцию проводят в лунках полистирольных планшетов. Реакция гемагглютинации позволяет осуществлять полуколичественную оценку содержания антител в сыворотке крови, титр антител определяют по наибольшему разведению образца, которое приводит к формированию осадка определенной плотности. Постановка метода примерно аналогична таковой ИФА, однако пробоподготовка занимает значительное время: исследуемую сыворотку необходимо титровать, а также подвергнуть истощению в отношении неспецифических агглютининов при помощи инкубации с формалинизированными эритроцитами барана в течение нескольких часов. Метод может быть автоматизирован, возможен приборный учет степени агглютинации в лунках.

«Золотым стандартом» при оценке напряженности противодифтерийного и противостолбнячного иммунитета является реакция нейтрализации. Для оценки концентрации антител к столбнячному токсину используется мышиная модель, количественную детекцию антител к дифтерийному токсину проводят при помощи клеток линии Vero. Реакция нейтрализации является чувствительным, специфичным и, что немаловажно, функциональным тестом, позволяющим оценить концентрацию «полезных» антител, способных не просто связывать токсин, а подавлять его негативное воздействие на организм или отдельные клетки. Тем не менее, применение реакции нейтрализации на практике сильно ограничено ввиду длительности и дороговизны анализа.

Основным и наиболее близким по технической сущности к разработанному методу является метод иммуноферментного анализа. Сущность метода заключается в следующем.

Диагностикум представляет собой конъюгат моноклональных антител против IgG человека с ферментом, в частности пероксидазой хрена. Реакция проводится в лунках прозрачного 96-луночного планшета из полистирола, стенки и дно которого сенсибилизированы антилигандом (дифтерийным анатоксином, столбнячным анатоксином, антигеном возбудителя коклюша). В лунки вносят исследуемую сыворотку крови, разведенную до необходимого титра. В ходе инкубации происходит связывание антител, содержащихся в образце с антилигандом иммуносорбента. Детекция антител производится при помощи ферментного конъюгата. Количество связываемого конъюгата прямо пропорционально концентрации искомых антител, оно оценивается по интенсивности ферментативной реакции в каждой лунке планшета. Для этого в лунки вносят хромогенный субстрат, например тетраметилбензидин, а затем одновременно останавливают ферментативную реакцию во всех лунках. Концентрация цветного продукта тем выше, чем больше концентрация целевых антител в образце сыворотки крови. Интенсивность цветной реакции оценивают, как правило, спектрофотометрически.

Основными недостатками метода является необходимость использования считывающего оборудования для оценки результатов, дорогостоящего и требующего участия высоко квалифицированных специалистов, что ограничивает возможность повсеместного использования метода. Кроме того, использование метода не удобно в ходе оценки поствакцинального иммунитета, индуцируемого комплексной коклюшно-дифтерийно-столбнячной вакциной, поскольку требует проведения трех отдельных анализов для каждого пациента.

Предлагаемое изобретение решает задачу по созданию более простой диагностической системы, позволяющей осуществлять оценку наличия протективного титра антител одновременно к антигенам коклюшного, дифтерийного и столбнячного возбудителей.

Решение задачи возможно благодаря тому, что предлагаемая тест-система выполнена в формате дот-иммуноанализа, причем на каждую твердую фазу сорбированы антигены возбудителей коклюша, дифтерии и столбняка одновременно. Оценка результатов анализа производится при помощи сканирования тест-полосок с последующей обработкой полученных изображений при помощи специализированной программы, в частности ImageJ (NIH, США) или иной программы, позволяющей оценивать интенсивность окрашивания отдельных пикселов.

Новизна используемого метода заключается в использовании иммуносорбента, представляющего собой белый пористый материал, в частности нитроцеллюлозу, сенсибилизированный антигенами коклюша, дифтерии и столбняка, а также диагностикума, представляющего собой конъюгат частиц коллоидного углерода с G белком стрептококка. Идентичность антигенов, используемых для иммуноанализа с теми, которые входят в состав цельноклеточной трехкомпонентной вакцины против коклюша, дифтерии и столбняка, позволяет использовать метод для мониторинга напряженности поствакцинального иммунитета.

Описание разработанного способа.

В качестве твердой фазы использовали нитроцеллюлозную мембрану, приготовленную в виде полосок. На твердую фазу сорбировали антигены возбудителей коклюша, дифтерии и столбняка, разведенные до конечной концентрации в физиологическом растворе, забуференном натрий-фосфатами до рН 7,25 (ЗФР). В качестве внутреннего положительного контроля на полоски сорбировали IgG мыши.

После высушивания стрипы помещали в блокирующий буфер, ЗФР с 1% бычьего сывороточного альбумина (БСА) и с 0,1% твина-20 (ЗФРТ), для исключения возможного неспецифического взаимодействия компонентов аналитической системы. Далее стрипы инкубировали с контрольными сыворотками крови, а также сыворотками вакцинированных детей, разведенными в блокирующем буфере в 40 раз.

Детекцию связанных антител производили при помощи углеродного диагностикума, представляющего собой конъюгат углеродных наночастиц с G белком стрептококка. Диагностикум готовили по оригинальному методу (Раев М.Б. Нанобиотехнологии в неинструментальной иммуноаналитике. Монография. РИО УрО РАН. Екатеринбург, 2012, С. 140).

Пример. В качестве твердой фазы использовали полоски (стрипы) из нитроцеллюлозной мембраны с диаметром пор 0,45 мкм размером 0,5×2 см.

На стрипы сорбировали по 3,5 мкл дифтерийного анатоксина (0,1 мг/мл), столбнячного анатоксина (0,05 мг/мл), суспензии клеток коклюшного микроба (20 МОЕ) и IgG мыши (положительный контроль, 0,1 мг/мл), разведенных в ЗФР. Стрипы высушивали и помещали в лунки пластикового планшета. Затем в лунки вносили блокирующий буфер (ЗФРТ) и размещали планшеты на шейкере в термостате при температуре +37°С на 60 мин. На следующем этапе стрипы трехкратно промывали ЗФРТ (длительность одного цикла промывки 5 минут) и в лунки вносили:

1. Образцы сывороток крови детей, вакцинированных цельноклеточной коклюшно-дифтерийно-столбнячной вакциной, разведенные 1:40 в ЗФРТ.

A. Пулы сывороток крови детей, содержащих коклюшные агглютинины в титрах 1:40 (слабоположительный образец) и 1:640 (сильноположительный образец), разведенные в блокирующем буфере в 40 раз;

Б. Международный стандарт ВОЗ (10/262, 1-й Международный стандарт) дифтерийного антитоксина, разведенный блокирующим буфером до концентраций 0,025 МЕ/мл и 0,0025 МЕ/мл (что соответствует концентрации антитоксинов в цельной сыворотке 1 и 0,1 МЕ/мл соответственно);

B. Международный стандарт ВОЗ (ТЕ-3, 1-й Международный стандарт) столбнячного антитоксина, разведенный блокирующим буфером до концентраций 0,025 МЕ/мл и 0,0025 МЕ/мл (что соответствует концентрации антитоксинов в цельной сыворотке 1 и 0,1 МЕ/мл соответственно).

После получасовой инкубации при +37°С стрипы промывали и в лунки вносили диагностикум в разведении 1:45 в ЗФРТ, что соответствует массовой доле углеродных частиц 0,02%. Спустя 60 минут диагностикум из лунок удаляли, стрипы промывали, высушивали и сканировали (сканер Canon Canoscan Lide 600f, программа CanoScan Toolbox v. 5.0, режим сканирования оттенки серого, разрешение 300 точек на дюйм). Полученные изображения обрабатывали при помощи программы ImageJ, оценивая интенсивность окрашивания твердой фазы в виде темных пятен в зонах нанесения антилигандов.

Полученные результаты для дифтерийных и столбнячных антител сравнивали с контрольными образцами, в результате чего сыворотки относили к одной из трех групп, в зависимости от концентрации антитоксинов: 1 МЕ/мл. Принадлежность к определенной группе определяла заключение, касающееся наличия протективного титра антитоксинов и длительности защиты (на основании данных работ J. et al. Knowledge-based approach to clinical decision-support system, with an application in tetanus serology // Clinica Chimica Acta. 1993. V. 222. P. 79-83, Scheibel I. et al. Duration of Immunity to Diphtheria and Tetanus after Active Immunization // Acta pathologica et microbiologica Scandinavica. 1966. V. 67. P. 380; Pietsch M. Impfserologie zur Erganzung von Impfungen // Der Allgemeinarzt. 1993. V. 18.):

Наличие протективного титра противококлюшных антител оценивали, сравнивая интенсивность окрашивания образца с пороговым значением. Величину порогового значения рассчитывали следующим образом:

где X — пороговое значение оптической плотности, А — оптическая плотность сильноположителъного образца, В — оптическая плотность слабоположительного образца

Числовой коэффициент 0,128 был выведен экспериментально на основании сопоставления данных дот-иммуноанализа и агглютинационного теста методом ROC-анализа. Если полученное значение оптической плотности образца выше порогового значения, то он содержит защитный уровень противококлюшных антител.

В результате исследования 135 сывороток крови детей с различным прививочным анамнезом в отношении коклюшно-дифтерийно-столбнячной вакцины в параллельном сравнении сконструированной тест-системы с традиционными методами детекции антител (ИФА на антитела к дифтерийному и столбнячному анатоксинам, реакция агглютинации на антитела к коклюшному микробу) было продемонстрировано, что чувствительность и специфичность метода в отношении детекции антител к коклюшу равны 88%, чувствительность выявления антител к столбняку составила 93,5%, специфичность — 90,9%, чувствительность выявления антител к дифтерийному анатоксину составила 92,4%, специфичность — 85%.

Таким образом, разработанный метод позволяет упростить и ускорить оценку напряженности поствакцинального иммунитета к коклюшу, дифтерии и столбняку. Он предоставляет возможность использовать одну процедуру для оценки иммунного ответа одновременно к антигенам трех различных инфекций и фактически является альтернативой существующим методам серодиагностики коклюша, дифтерии и столбняка. Разработанный метод не требует применения дорогостоящего регистрирующего оборудования, вместо которого для регистрации результатов предполагается использовать доступное и простое сканирующее оборудование с последующей компьютерной обработкой полученных сканированных изображений.

Таким образом, технический результат от использования изобретения заключается в упрощении, ускорении и унификации процедуры оценки напряженности поствакцинального иммунитета к коклюшу, дифтерии и столбняку, а также возможности длительного сохранения результатов анализа.

Заявляемое техническое решение соответствует критерию «промышленное применение», так как применяемые реагенты доступны, а исследования легко выполняемы.

Способ оценки эффективности вакцинации против коклюша, дифтерии и столбняка, заключающийся в полуколичественном определении напряженности поствакцинального иммунитета к антигенам возбудителей коклюша, дифтерии и столбняка, отличающийся тем, что твердую фазу, представляющую собой тест-полоски из нитроцеллюлозной мембраны с диаметром пор 0,45 мкм и размером 0,5×2 см, сенсибилизируют путем нанесения дифтерийного 3,5 мкл с концентрацией 0,1 мг/мл и столбнячного 3,5 мкл с концентрацией 0,05 мг/мл анатоксинов, цельноклеточного коклюшного антигена 3,5 мкл, 20 МОЕ, а также 3,5 мкл раствора IgG мыши с концентрацией 0,1 мг/мл в качестве положительного контроля и после подсушивания тест-полосок, инкубации их с блокирующим раствором ЗФРТ в лунках планшета, размещенного на шейкере в термостате при температуре +37°С в течение 60 мин, после чего твердую фазу трехкратно по 5 минут отмывают ЗФРТ, инкубируют с тестируемыми образцами сыворотки крови и контрольными образцами сывороток в течение 30 минут при температуре 37°С, вновь отмывают и «проявляют» антитела, связавшиеся с твердой фазой, при помощи диагностикума, представляющего собой конъюгат углеродных наночастиц с G белком стрептококка в разведении 1/45 в течение 60 минут, оценивая результат при помощи программы для анализа сканированных изображений после сканирования тест-полосок в обычном планшетном сканере, при содержании противостолбнячных и противодифтерийных антител менее 0,1 МЕ/мл оценивают недостаточную защиту, при которой требуется иммунизация, при 0,1-1,0 МЕ/мл — достаточный уровень защиты, при которой необходима бустерная доза вакцины, а при значениях более 1,0 МЕ/мл — как высокий уровень защиты, и иммунизация необходима через 5 лет и более, наличие протективного титра противококлюшных антител оценивают, рассчитывая пороговое значение: Х=0,128(А-В)+В, где X — пороговое значение оптической плотности, А — оптическая плотность сильно положительного образца, В — оптическая плотность слабоположительного образца, и если полученное значение оптической плотности образца выше порогового значения, то он содержит защитный уровень противококлюшных антител.

источник

Прививки от коклюша, дифтерии и столбняка — за и против. Возможные осложнения в случае заболевания и экстренная профилактика.

Коклюш, дифтерия и столбняк — тяжелейшие инфекции с большим количеством смертельных исходов. Очень важно знать их «в лицо», чтобы, столкнувшись, не запаниковать, не пытаться лечить самим, а срочно госпитализировать ребенка. Ну и, естественно, нет ничего лучше профилактики. Современные импортные вакцины (особенно «Инфанрикс») практически не дают побочных реакций, зато ваш малыш будет надежно защищен. Инфекционисты считают эту прививку самой важной и необходимой. Если вы противник прививок, подумайте еще раз — может быть, вы все-таки решите сделать эту прививку и тем самым спасете малыша, ведь от этих инфекций никто не застрахован. А ответственность за жизнь и здоровье крохи лежит прежде всего на вас.

Коклюш — инфекционное заболевание, вызываемое бактерией бордетелла (коклюшная палочка, палочка Борде-Жангу). Наиболее характерным признаком коклюша является затяжной приступообразный спазматический кашель.

Источником инфекции является больной человек. Период заразности длится начиная с 1 недели до появления кашля и продолжается 3 недели после появления кашля. Поскольку до появления характерного кашля отличить коклюш от других инфекций тяжело, в течение этой самой одной недели инфицированные дети как раз и успевают заразить свое окружение (воздушно-капельным путем при непосредственном общении). Инкубационный период (в этот период в организме уже развивается инфекционный процесс, но нет никаких признаков) составляет от 3 до 14 дней.

После заболевания развивается практически пожизненный иммунитет. Особенно опасен коклюш для новорожденных. До 1 года ребенок не имеет собственных антител, а материнские не поступают (даже если у матери есть иммунитет против коклюша). В этом возрасте коклюш протекает тяжело, высока частота смертельных исходов — в случае отсутствия прививки смертность среди детей 1 года жизни составляет 50-60%, детей других возрастов — 8%.

Выделяемый коклюшной палочкой токсин раздражает нервные окончания (рецепторы) в слизистых оболочках дыхательных путей, в результате чего от них в кашлевой нервный центр (находится в головном мозге) постоянно поступает информация об этом (в виде нервных импульсов). Импульсы возбуждают кашлевой центр, что и обусловливает появление характерных приступов кашля. А так как у нас в головном мозге все клеточки расположены очень близко, в процесс «возбуждения» могут вовлекаться соседние нервные центры. Поэтому может возникать рвота (характерна для окончания кашлевого приступа), сосудистые расстройства (падение артериального давления, сосудистый спазм — проявляется бледностью кожи), нервные расстройства (судороги).

Помимо кашлевых спазмов, коклюш проявляется умеренным повышением температуры тела, недомоганием и воспалением верхних дыхательных путей (фарингит, ларингит). Кашель сухой, имеет характер приступов, не снимается приемом лекарств. Приступы наступают от любых внешних раздражений — света, движений и др. Характерно, что приступ начинается с «предвестников» — царапанья за грудиной, першения в горле. Затем один за другим следуют кашлевые толчки, не дающие больному вдохнуть. А после вдоха кашель начинается снова. Таких приступов может быть до 15 в сутки (в среднем по 4 минуты).

Лечение больных проводится в стационаре. Палата должна хорошо проветриваться и увлажняться. Для лечения используются антибиотики (в начале заболевания), противорвотные и противокашлевые препараты. Длительность лечения составляет 7-10 дней.

В случаях контакта с больным коклюшем проводится экстренная профилактика. Она заключается в введении нормального человеческого иммуноглобулина и применении антибиотиков, относящихся к классу макролидов (эритромицин, азитромицин, рокситромицин, спирамицин, джозамицин, мидекамицин). Вакцинация среди непривитых по экстренным показаниям не проводится, поскольку для выработки иммунитета требуется как минимум 3-кратная вакцинация. Однако у детей, которые получили третью прививку АКДС 6 и более месяцев назад и не получили при этом ревакцинацию, ее можно провести досрочно.

Единственным надежным средством специфической профилактики коклюша является вакцина.

Осложнения: примерно у каждого десятого ребенка, заболевшего коклюшем, развивается воспаление легких, у каждого 50-го возникают судороги (у 3% грудных детей). В 1 на 250 случаев (у 1% грудных детей) поражается головной мозг (энцефалопатия). Коклюш и его осложнения могут привести к смерти ребенка, пик смертности от коклюша приходится на возраст до 1 года.

Дифтерия (от греч. diphthera — пленка, перепонка) известна со времен Гиппократа и Галена под названием «смертельная язва глотки», «удушающая болезнь». В XX веке дифтерия послужила причиной эпидемии (1943 г.), поразившей 1 млн человек и ставшей причиной примерно 50 тыс. смертей.

Из-за низкого охвата прививками в 90-х годах XX века снова возникла эпидемия. Дифтерией заболело около 120 тыс. человек, погибло около 6 тыс. человек. Начиная с 2002 года, в России вновь увеличивается рост заболеваемости, причем каждый четвертый случай имеет тяжелейшее течение.

Дифтерия — инфекционное заболевание, вызываемое коринебактерией (дифтерийная палочка). Инфекция проявляется интоксикацией и образованием характерных пленок на слизистых оболочках верхних дыхательных путей (реже — на конъюнктивах, в ранах, половых органах и др.), поражением нервной и сердечно-сосудистой систем.

Возбудитель дифтерии выделяет сильнейший токсин, обладающий нейропаралитическим (разрушает оболочку нервов), гемолизирующим (повреждение эритроцитов и попадание гемоглобина в кровь) и останавливающим клеточное дыхание свойствами.

Инфекция передается воздушно-капельным путем от больных или внешне здоровых детей-носителей. Причем носительство может длиться до 1 месяца. А в детском коллективе во время вспышки заболевания носителями являются 10% малышей! Возможно заражение дифтерией через предметы и продукты питания.

Инкубационный период длится 2-10 дней. Болезнь начинается с недомогания, повышения температуры до 38-39ºС, появления пленок беловатого цвета на миндалинах и зеве (боль в горле). В случае токсической формы характерен токсический отек лица и шеи, отек слизистой оболочки верхних дыхательных путей, приводящий к невозможности дыхания. Смерть наступает от удушья и остановки сердца.

Помимо классической дифтерии зева (92% случаев), имеют место и другие формы инфекции — дифтерия ран, слизистой глаз, кожи (язвы), носа.

Лечение проводится в стационаре сывороткой, содержащей антитоксические антитела и антибиотиками. Несмотря на адекватное лечение, 5-10% случаев заканчиваются смертью больного, риск летального исхода инфекции выше у детей младше 5 лет.

Профилактика осуществляется с помощью вакцинации , эффективность составляет 95-100%.

Осложнения: миокардит (воспаление сердечной мышцы), полиневрит (множественное воспаление нервов), параличи, нарушение зрения (двоение), поражение почек.

Столбняк (tetanus) — инфекционное заболевание, вызываемое бактерией клостридиум, поражающее как людей, так и животных. Впервые описан Гиппократом, у которого от столбняка умер сын.

Источником инфекции являются травоядные животные, у которых столбнячная палочка является частью микрофлоры кишечника. С калом животных микроб попадает в почву и сохраняется там длительное время в виде спор. Человек заражается через загрязненные (обычно почвой) раны кожи и слизистых оболочек. Инкубационный период в среднем 5-14 дней.

Симптомы столбняка связаны с воздействием на нервную систему токсина (яда), вырабатываемого бактерией. Сначала возникают местные, а впоследствии и генерализованные (распространенные по всему телу) спазмы (тонические судороги) мышц.

Характерные симптомы столбняка: «сардоническая улыбка» — спазм мышц лица (рот растянут, углы рта опущены), а также характерная поза (опистотонус), когда из-за спазма мышц спина человека дугообразно выгибается. Тонус мышц настолько силен, что приводит к переломам костей и отрывам мышц от костей. Из-за резкого напряжения мышц живота и диафрагмы дыхание поверхностное и учащенное. Из-за сокращения мышц промежности затруднены мочеиспускание и дефекация. Появляются общие судороги продолжительностью от нескольких секунд до минуты, провоцируемые часто внешними раздражителями (прикосновение к кровати и т. п.). Лицо больного синеет и выражает страдание. Вследствие судорог может наступить асфиксия, паралич сердечной деятельности и дыхания.

Прогноз начавшегося заболевания неблагоприятный. Несмотря на экстренную реанимацию, смертность достигает 25-80%. Смерть, как правило, наступает в результате спазма дыхательной мускулатуры и паралича сердечной мышцы.

При положительном исходе клинические проявления заболевания продолжаются 3-4 недели и более, но обычно на 10-12 день самочувствие значительно улучшается. У перенесших столбняк долгое время может наблюдаться общая слабость, скованность мышц.

Широкая вакцинация позволила значительно уменьшить заболеваемость, но столбняк не исчез окончательно. В России ежегодно регистрируется несколько десятков случаев, главным образом среди непривитых или не полностью привитых. В развивающихся странах столбняк особенно широко распространен среди новорожденных, у которых отсутствуют материнские антитела вследствие того, что мать не была привита или по причине искусственного вскармливания. По оценкам ВОЗ ежегодно в мире регистрируется 400 000 летальных исходов среди новорожденных.

Лечение столбняка включает хирургическую обработку раны, обеспечение полного покоя больному, нейтрализацию циркулирующего в крови токсина, уменьшение или снятие судорожного синдрома (применяют нейролептики — аминазин, пролазил, дроперидол; транквилизаторы или миорелаксанты — тубарин, диплацин), с профилактической целью назначаются антибиотики (бензилпенициллин, окситетрациклин). Непривитым проводят профилактику путем введения в разные участки тела столбнячного анатоксина и противостолбнячной сыворотки. Привитым лицам вводится только столбнячный анатоксин. В последнее время используют специфический гамма-глобулин, полученный от доноров. Все перечисленные препараты служат средствами воздействия на циркулирующий в крови токсин.

Единственным средством профилактики является прививка, эффективность которой составляет 95-100%.

Осложнения: пневмония, разрыв мышц, компрессионный перелом позвоночника.

источник

Биоматериал: Сыворотка крови

Срок выполнения (в лаборатории): 8 р.д. *

Исследование, направленное на выявление серологических маркеров инфицирования дифтерией — суммарных специфических антител IgM и IgG, выработка которых осуществляется организмом человека в ответ на взаимодействие с возбудителем. Дифтерия (diphtheria, удушающая болезнь) острое инфекционное заболевание, характеризующаяся фибринозным поражением дыхательных путей и токсическим поражением нервной системы, сердечно-сосудистой системы, почек.
Возбудитель дифтериии Corynebacterium diphthriae (бацилла Лефлера), относящаяся к роду Corynebacterium грамположительная палочка булавовидной формы.
Источник возбудителя — больные любой клинической формой заболевания, а так же бактерионосители токсигенных штаммов.
Основной путь передачи возбудителя воздушно-капельный, но так же возможно заражение контактно- бытовым путем, и реже, алиментарным путем (через пищевые продукты, в основном молоко).
Инкубационный период дифтерии короткий, от 2-12 суток, но в основном составляет 5-7 суток. Клиническая картина заболевания зависит от локализации процесса. Дифтерия носа — характеризуется подострым началом, температурная реакция индивидуальна, в зависимости от иммунного ответа организма: из носовых ходов начинают выделяться слизисто-гнойные, сукровичные выделения, около носовых ходов формируется мацерация кожных покровов, при осмотре носовых ходов путем риноскопии отмечаются фибринозные пленки, корки, которые так же могут распространяться на кожу, гайморовы пазухи. Течение заболевания зависит от индивидуальных особенностей пациента и своевременности начатого этиотропного лечения.
Дифтерия относится к вакциноуправляемым инфекциям, то есть повсеместная вакцинация значительно снизила частоту развития данного заболевания, и значительно сократила летальность от данной инфекции. В РФ иммунопрофилактика заболевания проводится в соответствии с национальным календарем прививок, вакцинами содержащими адсорбированный дифтерийный анатоксин.

• диагностика дифтерии
• оценка напряженности поствакцинального иммуннитета
• в качестве дифференциальной диагности заболеваний проекающих с поражением респираорного тракта

Специальная подготовка не требуется. Рекомендуется взятие крови натощак или не ранее чем через 4 часа после последнего приема пищи.

Состояние антитоксического иммунитета против дифтерии:

• титр 1/10, 1/20 – не защищены
• титр 1/40 – минимальный защитный титр;
• титр 1/80, 1/160 – низкие защитные титры;
• титр 1/320, 1/640 – средние защитные титры;
• титр 1/1280 – высокий защитный титр.

Взятие крови проводится натощак, либо после 4-ех часовой тощаковой паузы после приема пищи из удобного венозного доступа (локтевая вена). Взятие биоматериала осуществляется в вакуумную систему Вакутейнер.
Факторы, влияющие на результат:
неправильное взятие, хранение и транспортировка биоматериала. Гемолиз, липидемия.

Адреса медицинских центров, в которых можно заказать исследование, уточняйте по телефону 8-800-100-363-0
Все медицинские центры СИТИЛАБ в г. Москва >>

* На сайте указан максимально возможный срок выполнения исследования. Он отражает время выполнения исследования в лаборатории и не включает время на доставку биоматериала до лаборатории.
Приведенная информация носит справочный характер и не является публичной офертой. Для получения актуальной информации обратитесь в медицинский центр Исполнителя или call-центр.

источник